实验原理
叶绿素广泛存在于水果、蔬菜等绿色植物组织中，与植物细胞中的蛋白质结合形成叶绿体。当植物细胞死亡时，叶绿素就会释放出来。游离叶绿素非常不稳定，对光和热敏感；在酸性条件下，叶绿素形成绿褐色脱镁叶绿素，在稀碱液中可水解成亮绿色叶绿素。酸式盐以及植醇和甲醇。高等植物中的叶绿素有两种：叶绿素a和b，均易溶于乙醇、丙酮和丙酮。
叶绿素含量的测定方法有很多，其中有： 1、原子吸收光谱法：通过测定镁的含量间接计算出叶绿素的含量。 2、分光光度法：用分光光度计测量叶绿素提取物在最大吸收波长处的吸光度值，然后可以利用朗伯-比尔定律计算提取物中各色素的含量
叶绿素a和叶绿素b在645nm和663nm处有最大吸收，两条吸收曲线在652nm处相交。因此，分别测定了提取物在645nm、663nm和652nm波长处的吸光度值，可根据经验公式分别计算出叶绿素a、叶绿素b和总叶绿素的含量。
仪器、原材料和试剂仪器仪器分光光度计、电子顶装天平（灵敏度0.01g）、研钵、棕色容量瓶、小漏斗、定量滤纸、吸水纸、擦拭纸、滴管。原料 新鲜（或干燥）植物叶试剂 1. 96% 乙醇（或 80% 丙酮） 2. 石英砂 3. 碳酸钙粉。
操作步骤
取新鲜的植物叶子（或其他绿色组织）或干燥的材料，擦去组织表面的污垢，去除中脉，切块。称取2g新鲜切碎的样品，放入研钵中，加入少量石英砂、碳酸钙粉和3ml 95%乙醇，研磨成均质浆液，加入10ml乙醇，继续研磨至组织变白.静置 3 到 5 分钟。取1张滤纸放入漏斗中，用乙醇润湿，将提取液沿玻璃棒倒入漏斗中，滤液倒入100ml棕色容量瓶中；用少量乙醇冲洗研钵、杵和残留物几次，最后连同残渣一起倒入漏斗中。用滴管吸去乙醇，将滤纸上的叶绿体色素全部洗入容量瓶中。直到滤纸和残渣没有绿色为止。最后用乙醇定容至100ml，摇匀。取叶绿体色素提取物，在665nm、645nm和652nm波长处测定吸光度，以95%乙醇作为空白对照。
计算
根据实验原理中提供的经验公式，分别计算植物材料中叶绿素a、b和总叶绿素的含量。